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RIP(RNA 结合蛋白免疫沉淀)

  发布时间: 2020-09-24      浏览量:893
RIP RNA结合蛋白 免疫沉淀 RIPseq RIPSeq RNA相互作用

         RIP 技术(RNA Binding Protein Immunoprecipitation Assay,RNA 结合蛋白免疫沉淀)主要是运用针对目标蛋白的抗体把相应的RNA-蛋白复合物沉淀下来,经过分离纯化就可以对结合在复合物上的RNA 进行qPCR验证或者测序分析。RIP 是研究细胞内RNA 与蛋白结合情况的技术,是了解转录后调控网络动态过程的有力工具。RIP可以看成是普遍使用的染色质免疫沉淀ChIP技术的类似应用,但由于研究对象是RNA-蛋白复合物而不是DNA-蛋白复合物,RIP实验的优化条件与ChIP实验不太相同,如:RIP反应体系中的试剂和抗体绝对不能含有RNA酶,抗体需经RIP实验验证等。

      

RIP实验示意图.png

RIP实验步骤

一、细胞裂解(Time 30 min

1. 收集1×10^7 细胞样品,加入1 mL PBS 洗涤细胞,4°C 1000 rpm 离心5 min 收集细胞弃上清;

2. 配制细胞裂解液(298μL RIP lysis buffer1.5μL Protease inhibitor cocktail1 μL RNase inhibitor ,细胞沉淀中加入300μL裂解液后涡旋混匀,冰上放置10 min

3. 4℃16,100 g 离心10 min 转移上清至新的无RNase 离心管中备用。

二、Protein A/G 磁珠与抗体结合

1.将磁珠充分涡旋混匀,每组RIP 样品准备50 μL Protein A/G beads,磁珠中加入500 μL RIP wash buffer颠倒混匀洗涤,磁力架收集磁珠并去上清;

2. 向磁珠中再次加入500 μL  RIP wash buffer颠倒混匀洗涤,磁力架收集磁珠并去上清;

3 将含有磁珠的EP管从磁力架取下,加入100 μL  RIP wash buffer,此为平衡好的磁珠,然后加入5μg 相应的抗体,对照组加入IgG抗体;

4.室温旋转孵育30min

5. 短暂离心后将EP管放入磁力架并去上清;

6. 将含有磁珠的EP管从磁力架取下,加入500 μL  RIP wash buffer 颠倒混匀;

7. 短暂离心后将EP管放入磁力架并去上清;

8. 重复步骤67,共洗涤2次;

9. 将含有磁珠的EP管从磁力架取下,加入500 μL  RIP wash buffer 颠倒混匀备用。

三、免疫沉淀

1. 配制RIP免疫沉淀buffer


×1

RIP Wash Buffer

860 μL

0.5   M EDTA

35 μL

RNase Inhibitor

5 μL

Total

900 μL

2. 将第二部分9步的EP管短暂离心后放入磁力架并去上清,加入900 μL  RIP 免疫沉淀 buffer备用;

3.吸取第一部分第3步中的100μL细胞裂解液加入到上述900μL磁珠抗体复合物中,总体积为1mL

4. 另外,吸取10μL细胞裂解液放入新的无RNase 离心管并标记为Input-80 °C存放,与RIP后的RNA一起纯化。吸取10μL细胞裂解液放入新的无RNase 离心管,加入10 μL of 2 X SDS-PAGE loading buffer 100°C变性后SDS-PAGE并检测蛋白的表达;

5. 1ml 磁珠-抗体-细胞裂解液复合物4°C旋转孵育8小时;

6. 短暂离心后将EP管放入磁力架并去上清;

7. 将含有磁珠的EP管从磁力架取下,加入500 μL RIP wash buffer 颠倒混匀。短暂离心后将EP管放入磁力架并去上清;

8. 重复步骤7,共洗涤6次;

四、提取RNA

1. 配制蛋白酶K buffer,每个IP样本需要150μL


×1

RIP Wash Buffer

126 μL

10%   SDS

15 μL

Proteinase K (20mg/ml)

9 μL

Total

150 μL

2. 150μL蛋白酶K buffer重悬第三部分第8beads

3. 第三部分第4步里的Input中加入116μL RIP Wash Buffer15 μL 10% SDS9 μL Proteinase K (20mg/ml),总体积为150μL

4. 55℃震荡孵育30min,洗脱RNA,磁力架收集磁珠转移上清至新的无RNase 离心管中。每管中加250μL RIP wash buffer

5. 上清加入等洗脱体积(400 μL)苯酚-氯仿-异戊醇混合液到IPInput样品,剧烈颠倒混匀15秒;14000 rpm4℃离心10 分钟,收集上层水相350μL,转移到新的无RNase 离心管中。上清加入400 μL氯仿,剧烈颠倒混匀15 秒;14000 rpm,室温离心10 分钟,收集上层水相300μL转移到新的无RNase 离心管中;

6. 每管加入50 μL Salt Solution I, 15 μL of Salt Solution II,  5μL Precipitate Enhancer, 850 μL 100% ethanol 充分颠倒混匀;–80℃静置3 h 到过夜沉淀RNA 样品;

7.  4℃16100 g 离心30 分钟,弃上清;

8.  加入1 mL 预冷的80%乙醇,4℃14000rpm 离心15 分钟,弃上清,室温静置风干10分钟;

9. 加入30 μL RNase-free water 溶解RNA-80℃保存。




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